WBC1092P小鼠臟器組織白細胞分離液試劑盒說(shuō)明書(shū)
小鼠臟器組織白細胞分離液試劑盒說(shuō)明書(shū)
（細胞培養及分子生物學(xué)）
【產(chǎn)品規格】
WBC1092P
200ml/Kit
【產(chǎn)品組成】
為方便廣大用戶(hù)使用，試劑內容如下：
| 名稱(chēng) | 產(chǎn)品規格 | 編號 |
A | 小鼠臟器組織白細胞分離液 |
| 200ml |
B | 樣本稀釋液（贈品） | 2010C1119 | 200ml |
C | 清洗液（贈品） | 2010X1118 | 200ml |
D | 紅細胞裂解液（贈品） | NH4CL2009 | 100ml |
E | 說(shuō)明書(shū) |
| 1份 |
【實(shí)驗前準備】
A．適用儀器
zui大離心力可達 1200g的水平轉子離心機
B．耗材
產(chǎn)品名稱(chēng) | 產(chǎn)品貨號 | 產(chǎn)地 |
15ml離心管散裝 | 339650 | 美國 NUNC |
15ml離心管架裝 | 339651 | 美國 NUNC |
50ml離心管散裝 | 339652 | 美國 NUNC |
50ml離心管架裝 | 339653 | 美國 NUNC |
無(wú)菌膠頭滴管或塑料滴管 |
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【檢驗方法】
全過(guò)程樣本、試劑及實(shí)驗環(huán)境均需在 20±2℃的條件下進(jìn)行。
首先取抗凝血，根據樣本量大小，分以下兩種情況：
情況 A：血液樣本量小于 5ml時(shí)，實(shí)驗方法如下：
1.取一支15ml離心管，先加入 5ml分離液
2.用吸管小心吸取血液樣本加于分離液液面上，400-500g，離心20-30min（注：如改
變血液樣本及分離液用量，需相應調整離心力及離心時(shí)間，具體離心條件需客戶(hù)自行摸
索，以達到分離效果。）
3.離心后用吸管小心吸取所有環(huán)狀乳白色細胞層（一層或兩層），加入10 ml清洗液（產(chǎn)
品編號：2010X1118），混勻細胞。250g，離心 10min。重復洗滌 2-3次，即得所需白細
胞。
4.如有紅細胞殘留請使用紅細胞裂解液（產(chǎn)品編號：NH4CL2009）裂解紅細胞，具體操
作方法詳見(jiàn)“紅細胞裂解液使用說(shuō)明”。
情況 B：血液樣本量大于等于 5ml 時(shí)，實(shí)驗方法如下：
1.取一支適當的離心管，先加入與樣本等量的分離液。
2.將血液樣本小心加于分離液之液面上， 450-650g（zui大離心力可至 1000g），離心
20-30min。（注：根據血液樣本量確定離心條件，血液量越多，離心力越大，離心
時(shí)間越長(cháng)，具體離心條件需客戶(hù)自行摸索，以達到分離效果。加入血液樣本后，樣
本及分離液總體積不得超過(guò)離心管總體積的三分之二）。
3.剩余步驟同“情況 A”中步驟 3與步驟 4。
【注意事項】
1.全過(guò)程樣本、試劑及實(shí)驗環(huán)境均需在 20±2℃的條件下進(jìn)行。為獲得的實(shí)驗結果，zui
好在取血 2h 內進(jìn)行實(shí)驗，血液存放時(shí)間越長(cháng)，細胞分離效果越差。血液放置超過(guò) 6h 后
分離效果更差甚至不能達到分離目的。
2.本實(shí)驗不要使用高聚合材質(zhì)（如聚苯乙烯）的塑料制品，應使用無(wú)靜電、低靜電離
心管及未經(jīng)堿處理過(guò)后的玻璃制品，因為靜電作用將導致細胞貼壁、堿處理的玻璃表面
會(huì )變成毛面，影響細胞分離效果。
3.分離液用量大于稀釋后血液樣本時(shí)，分離效果更佳。
4.當血液樣本粘度過(guò)高需稀釋時(shí)，*稀釋方法：將血液與樣本稀釋液（產(chǎn)品編號：
2010C1119）1:1稀釋混勻備用。注：不當的稀釋方法會(huì )降低細胞得率及活性。如血液樣
本經(jīng)過(guò)稀釋則分離過(guò)程中需適當降低離心力和離心時(shí)間。
5.如實(shí)驗后細胞得率或活性過(guò)低，請技術(shù)以尋求幫助支持。
【儲存條件及有效期】
18-25℃保存，有效期 2年。本品易感染細菌，需無(wú)菌條件操作。無(wú)菌條件下操作，啟
封后置常溫保存。如 4℃保存，本分離液易出現白色結晶，影響分離效果。
【參考值（參考范圍）】
本實(shí)驗白細胞提取率及純度大于 80%。
下表為成年人外周血中各種細胞的數量及比例，用戶(hù)可適當進(jìn)行參考。
【相關(guān)實(shí)驗技術(shù)方案】
1.所獲得白細胞的培養技術(shù)。
2.所獲得白細胞的核酸提取技術(shù)。
3.所獲得白細胞的鑒定方法
A.流式細胞技術(shù)
B.免疫組化技術(shù)
C.原位雜交技術(shù)
D.PCR技術(shù)
注：上述技術(shù)方案詳情請登陸本搜索“細胞分離、
純化、擴增、鑒定及生物治療技術(shù)手冊”，并在說(shuō)明書(shū)項目欄下下載使用。
【可能存在的問(wèn)題及解決方法】
1.由于血液粘度、細胞密度等差異可能造成的問(wèn)題及解決方案如下表所示：
出現情況 | 出現原因 | 建議解決方案 |
離心后目的細胞存在于血漿層或稀釋液層 | 轉速過(guò)小或離心時(shí)間過(guò)短 | 適當增減轉速 |
離心后目的細胞存在于分離液中 | 轉速過(guò)大或離心時(shí)間過(guò)長(cháng) | 適當增減轉速 |
離心后白環(huán)層彌散 | 細胞密度過(guò)大 | 調整細胞密度 |
離心后白環(huán)層太淺或看不見(jiàn) | 細胞密度過(guò)小 | 調整細胞密度 |
2.本分離液分離細胞的原理為密度梯度離心，其密度與溫度、大氣壓等密切相關(guān)。不同地
區客戶(hù)可根據當地情況對離心條件進(jìn)行適當調整。建議對離心條件進(jìn)行調整時(shí)，恒定離
心時(shí)間，對離心轉速進(jìn)行調整。
3.本分離液依照標準，全部使用藥用級原料，性能指標與國產(chǎn)同類(lèi)產(chǎn)品略有不同，可
能出現紅細胞沉降不*的情況，可以適當加大離心轉速。
注：在對離心條件進(jìn)行調整時(shí)，離心轉速的加減以 50-100g為基數，直至達到分離效果，
離心力zui小不得小于 400g，zui大不得大于 1200g。離心時(shí)間以 20-30min為準。
